Digestibilidad aparente de materia seca, proteína y carbohidratos de la dieta con ensilado biológico de harina de maíz en Cryphiops (C.) caementarius
DOI:
https://doi.org/10.15381/rpb.v29i2.21144Palabras clave:
asimilación de nutrientes, bacterias ácido lácticas, camarón de río, hidrolizado de maíz, nutrición de crsutáceosResumen
El objetivo del estudio fue determinar la digestibilidad aparente de la materia seca, proteína y carbohidratos de la dieta con ensilado biológico de harina de maíz en Cryphiops (C.) caementarius. Camarones adultos (4.50 a 7.20 cm de longitud total), se colectaron del río Pativilca (Lima, Perú) y en laboratorio se mantuvieron en recipientes individuales instalados dentro de seis acuarios (cuatro camarones por acuario). La dieta control fue sin ensilado y para la dieta experimental se reemplazó el 75% de la harina de maíz por el ensilado biológico de harina de maíz; ambas dietas tuvieron 1% de óxido crómico como marcador inerte. Los camarones fueron alimentados dos veces por día (40% a las 08:00 h y 60% a las 18:00 h) con el 6% del peso húmedo, durante 10 días. Para la colección de heces, los camarones fueron trasladados a un sistema de caja cribada (12 compartimentos) instalada dentro de un acuario. La digestibilidad aparente se determinó en base seca. Los camarones alimentados con la dieta con ensilado biológico de harina de maíz tuvieron altos coeficientes de digestibilidad aparente de carbohidratos (95.69%), proteína cruda (80.02%) y materia seca (76.19%), que aquellos alimentados con la dieta sin ensilado (p<0.05) que fue de 93.48, 78.21 y 74.36%, respectivamente. Los camarones adultos digieren con eficiencia los carbohidratos de la dieta con ensilado biológico de harina de maíz, en vez de la proteína de dicha dieta.
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Referencias
Acosta A, Quiñones D, Reyes W. 2018. Effect of diets with soy lecithin on the growth, molting and survival of males of the river shrimp Cryphiops caementarius (Crustacea: Palaemonidae). Sci Agropecu. 9(1):143–151. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2018.01.15
Anh NTN, Hien TTT, Mathieu W, Hoa NV, Sorgeloos P. 2009. Effect of fishmeal replacement with Artemia biomass as a protein source in practical diets for the giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii. Aquac Res. 40(6):669–680. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.02143.x
AOAC. 1990. Official methods of analysis. 15th ed. Helrich K, editor. Arlington, Virginia, USA.
Augusto A, Valenti WC. 2016. Are there any physiological differences between the male morphotypes of the freshwater shrimp Macrobrachium amazonicum (Heller, 1862) (Caridea: Palaemonidae)? J Crustac Biol. 36(5):716–723. https://doi.org/10.1163/1937240X-00002467
Ayisi CL, Hua X, Apraku A, Afriyie G, Kyei BA. 2017. Recent studies toward the development of practical diets for shrimp and their nutritional requeriments. HAYATI J Biosci. 24:109–117. https://doi.org/10.1016/j.hjb.2017.09.004
Bahamonde N, Vila I. 1971. Sinopsis sobre la biología del camarón de río del norte. Biol Pesq. 5:3–60.
Betancourt S, Ayala A, Ramírez C. 2014. Effecto del proceso de fermentación con bacterias ácido lácticas sobre propiedades reológicas de masas de maíz QPM. Rev UDCA Actual Divulg Científica. 17(2):503–511.
Cabrera E, Marcelo Z, Reyes W, Azañero C. 2019. Effect of diets with high concentration of Saccharomyces cerevisiae on the proliferation of hemocytes in male shrimp Cryphiops caementarius. Rev Investig Vet del Perú. 30(3):1057–1067. http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v30i3.16733
Carvalho DA, Collins PA, De Bonis CJ. 2011. Gut evacuation time of Macrobrachium borelli (Caridea: Palaemonidae) feeding ob three types of prey from the littoral-benthic community. J Crustac Biol. 31(4):630–634. https://doi.org/10.1651/10-3446.1
Cheng AC, Yeh SP, Hu SY, Lin HL, Liu CH. 2019. Intestinal microbiota of white shrimp, Litopenaeus vannamei, fed diets containing Bacillus subtilis E20-fermented soybean meal (FSBM) or an antimicrobial peptide derived from B. subtilis E20-FSBM. Aquac Res. 51(1):41–50. https://doi.org/10.1111/are.14345
Coelho-Emerenciano MG, Massamitu-Furuya W. 2006. Ensilado de maíz en dietas para postlarva de camarón de agua dulce Macrobrachium rosenbergii. Investig Mar. 34(2):57–61. https://dx.doi.org/10.4067/s0717-71782006000200006
Cornejo-Ramírez YI, Martínez-Cruz O, Del Toro-Sánchez CL, Wong-Corral FJ, Borboa-Flores J, Cinco-Moroyoqui FJ. 2018. The structural characteristics of starches and their functional properties. CYTA - J Food. 16(1):1003–1017. https://doi.org/10.1080/19476337.2018.1518343
Cornejo J, Pérez L, Reyes W. 2015. Efecto de la levadura Saccharomyces cerevisiae en la dieta de machos del camarón Cryphiops caementarius (Crustacea, Palaemonidae) sobre la cuenta total y diferencial de hemocitos. Rev Bio Ciencias. 3(3):173–186. https://doi.org/10.15741/revbio.03.03.04
D’Abramo LR, New MB. 2010. Nutrition, feeds and feeding. In: New MB, Valenti WC, Tidwell JH, D’Abramo LR, Kutty MN, editors. Freshwater Prawns. Biology and Farming. Wiley-Blackwell Publishing Ltd. p. 218–238
Dávila E, Medina J, Reyes W. 2013. Crecimiento y supervivencia de postlarvas de Macrobrachium inca (Holthuis, 1950) (Crustacea, Palaemonidae) alimentadas con ensilado biológico. Intropica. 8(1):79–86.
Fagbenro O, Jauncey K. 1995. Water stability, nutrient leaching and nutritional properties of moist fermented fish silage diets. Aquac Eng. 14(2):143–153. https://doi.org/10.1016/0144-8609(94)P4432-B
Foysal MJ, Fotedar R, Siddik MAB, Tay A. 2020. Lactobacillus acidophilus and L. plantarum improve health status, modulate gut microbiota and innate immune response of marron (Cherax cainii). Sci Rep. 10(1):1–13. https://doi.org/10.1038/s41598-020-62655-y
Gallardo-Carril J, Reyes-Avalos WE. 2020. Diets with biological silage of cornmeal improve the productive performance of river shrimp Cryphiops caementarius (Crustacea: Palaemonidae). Sci Agropecu. 11(3):409–417. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2020.03.13
De Grave S, Fransen CHJ. 2011. Carideorum catalogus: The recent species of the Dendrobranchiate, Stenopodidean, Procarididean and Caridean Shrimps (Crustacea: Decapoda). Zool Meded Leiden. 85(9):30.ix.2011: 195-589. https://decapoda.nhm.org/pdfs/32283/32283-001.pdf
Guo R, Liu YJ, Tian LX, Huang JW. 2006. Effect of dietary cornstarch levels on growth performance, digestibility and microscopic structure in the white shrimp, Litopenaeus vannamei reared in brackish water. Aquac Nutr. 12(1):83–88. https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2006.00384.x
Gwirtz JA, Garcia-Casal MN. 2014. Processing maize flour and corn meal food products. Ann N Y Acad Sci. 1312(1):66–75. https://doi.org/10.1111/nyas.12299
Irvin SJ, Tabrett SJ. 2005. A novel method of collecting fecal samples from spiny lobsters. Aquaculture. 243(1–4):269–272. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.10.001
Jones PL, Silva SS. 1997. Apparent nutrient digestibility of formulated diets by the Australian freshwater crayfish Cherax destructor Clark (Decapoda, Parastacidae). Aquac Res. 28(11):881–891. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.1997.00913.x
Jumars PA. 2000. Animal guts as ideal chemical reactors: Maximizing absorption rates. Am Nat. 155(4):527–543. https://doi.org/10.1086/303333
Junges D, Morais G, Spoto MHF, Santos PS, Adesogan AT, Nussio LG, Daniel JLP. 2017. Influence of various proteolytic sources during fermentation of reconstituted corn grain silages. J Dairy Sci. 100(11):9048–9051. https://doi.org/10.3168/jds.2017-12943
Kong Y, Ding Z, Zhang Y, Zhou P, Wu C, Zhu M, Ye J. 2019. Types of carbohydrate in feed affect the growth performance, antioxidant capacity, immunity, and activity of digestive and carbohydrate metabolism enzymes in juvenile Macrobrachium nipponense. Aquaculture. 512:734282. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.734282
Liew KS, Yong ASK, Lim L-S, Kawamura G. 2020. Dietary sugarcane juice as a feeding stimulant for the pusple mud crab Scylla tranquebarica. Aquac Res. 51:2164–2167. https://doi.org/10.1111/are.14545
Loya-Javellana GN, Fielder DR, Thorne MJ. 1995. Foregut evacuation, return of appetite and gastric fluid secretion in the tropical freshwater crayfish, Cherax quadricarinatus. Aquaculture. 134(3–4):295–306. https://doi.org/10.1016/0044-8486(95)00050-C
Méndez M. 1981. Claves de identificación y distribución de los langostinos y camarones (Crustacea: Decapoda) del mar y ríos de la costa del Perú. Bol Inst del Mar del Perú. 5:1–170.
Moscoso V. 2012. Catálogo de crustáceos decápodos y estomatópodos del Perú. Bol Inst del Mar del Perú. 27(1–2):8–207.
PRODUCE. 2020. Anuario estadístico pesquero y Acuícola 2019. Perú: Ministerio de la Producción. https://ogeiee.produce.gob.pe/index.php/en/shortcode/oee-documentos-publicaciones/publicaciones-anuales/item/949-anuario-estadistico-pesquero-y-acuicola-2019
Radwan MI, El Shal AM. 2012. Effect of binding materials, feeding rate and die profile on aquatic pellets quality using ring-die pelleting machine. Misr J Agric Eng. 29(1):101–116. https://doi.org/10.21608/mjae.2012.102567
Ramírez M, Cántaro R, Reyes W. 2018. Growth and survival of males of Cryphiops caementarius (Palaemonidae) with diets supplemented with common salt. Lat Am J Aquat Res. 46(2):469–474. https://doi.org/10.3856/vol46-issue2-fulltext-22
Reyes-Avalos W. 2016. Effect of culture container on the survival and growth of male Cryphiops caementarius in individualized systems. Rev Bio Ciencias. 3(4):311–325. https://dx.doi.org/10.15741/revbio.03.04.06
Reyes W, Terrones S, Baltaodano I. 2017. Efectos de la regeneración de quelípodos en la muda y crecimiento de machos de Cryphiops caementarius Molina, 1782 (Decapoda, Palaemonidae). Rev Bio Ciencias. 04(04):1–18. https://dx.doi.org/10.15741/revbio.04.04.05
Rubio L. 2010. Coeficiente de digestibilidad proteica de dos tipos de ensilado, en juveniles de “camarones de río” Cryphiops caementarius, en condiciones de laboratorio. Tesis de Biólogo Acuicultor. Chimbote: Universidad Nacional del Santa, Perú. 45 p.
Santos EM, da Silva TC, Macedo CHO, Campos FS. 2013. Lactic Acid Bacteria in Tropical Grass Silages. In: Lactic Acid Bacteria - R & D for Food, Health and Livestock Purposes. InTech. http://www.intechopen.com/books/lactic-acid-bacteria-r-d-for-food-health-and-livestock-purposes/lactic-acid-bacteria-in-tropical-grass-silages
Saputra I, Fotedar R, Gupta SK, Siddik MAB, Foysal MJ. 2019. Effects of different dietary protein sources on the immunological and physiological responses of marron, Cherax cainii (Austin and Ryan, 2002) and its susceptibility to high temperature exposure. Fish Shellfish Immunol. 88:567–577. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2019.03.012
Sarman V, Vishal R, Mahavadiya D, Sapra D. 2018. Nutritional aspect for freshwater prawn (Macrobrachium rosenbergii) farming. Int J Fauna Biol Stud. 5(2):172–175.
Senmache N, Reyes W. 2020. Efecto de dietas con zeolita natural en el crecimiento y supervivencia del camarón de río Cryphiops caementarius. Rebiol. 4(1):30–38. https://dx.doi.org/10.17268/rebiol.2020.40.01.04
Siccardi III AJ, Lawrence AL, Gatlin DM, Fox JM, Castille FL, Perez-Velazquez M, Gonzáles-Félix ML. 2006. Digestibilidad aparente de energía, proteína y materia seca de ingredientes utilizados en alimentos balanceados para el camarón blanco del Pacífico Litopenaeus vannamei. In: Cruz LE, Ricque D, Tapia M, Nieto MG, Villarreal DA, Puello AC, García A, editors. Anaces en Nutrición Acuícola VIII. VIII Simposium Internacional de Nutrición Acuícola. 15-17 noviembre. Universidad Autónoma de Nuevo León, Monterrey. México. p. 213–237.
Siddik MAB, Fotedar R, Chaklader MR, Foysal MJ, Nahar A, Howieson J. 2020. Fermented animal source protein as substitution of fishmeal on intestinal microbiota, immune-related cytokines and resistance to Vibrio mimicus in freshwater crayfish (Cherax cainii). Front Physiol. 10:1635. https://doi.org/10.3389/fphys.2019.01635
Simon CJ. 2009. The effect of carbohydrate source, inclusion level of gelatinised starch, feed binder and fishmeal particle size on the apparent digestibility of formulated diets for spiny lobster juveniles, Jasus edwardsii. Aquaculture. 296(3–4):329–336. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.08.032
Smith DM, Tabrett SJ. 2004. Accurate measurement of in vivo digestibility of shrimp feeds. Aquaculture. 232(1–4):563–580. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.08.011
Sundaravadivel C, Sethuramalingam TA. 2017. Growth performance of Macrobrachium idae juveniles fed with carbohydrates rich diets. J Adv Zool. 38(1):33–42.
Suresh AV, Kumaraguru vasagam KP, Nates S. 2011. Attractability and palatability of protein ingredients of aquatic and terrestrial animal origin, and their practical value for blue shrimp, Litopenaeus stylirostris fed diets formulated with high levels of poultry byproduct meal. Aquaculture. 319(1–2):132–140. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.06.039
Terrazas M, Civera R, Ibarra L, Goytortúa E. 2010. Coeficientes de utilización digestiva aparente de materia seca, proteína y aminoácidos esenciales de ingredientes terrestres para el camarón del Pacífico Litopenaeus vannamei (Decapoda: Penaeidae). Rev Biol Trop. 58(4):1561–1576. https://doi.org/10.15517/rbt.v58i4.5431
Terrones S, Reyes W. 2018. Effect of diets with biological silage of mollusk residues on the growth of shrimp Cryphiops caementarius and tilapia Oreochromis niloticus in intensive co-culture. Sci Agropecu. 9(2):167–176. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2018.02.01
Tsai CY, Chi CC, Liu CH. 2019. The growth and apparent digestibility of white shrimp, Litopenaeus vannamei, are increased with the probiotic, Bacillus subtilis. Aquac Res. 50(5):1475–1481. https://doi.org/10.1111/are.14022
Velurtas SM, Díaz AC, Fernández-Gimenez AV, Fenucci JL. 2011. Influencia del nivel de almidón y celulosa en la dieta sobre el perfil metabólico y digestibilidad aparente en camarones penaeoideos. Lat Am J Aquat Res. 39(2):214–224. https://doi.org/10.3856/vol39-issue2-fulltext-3
Viacava M, Aitken R, Llanos J. 1978. Estudio del camarón en el Perú 1975-1976. Bol Inst del Mar del Perú. 3(5):162–232.
Vidra A, Tóth AJ, Németh Á. 2017. Lactic acid production from cane molasses. Waste Treat Recover. 2(1):13–16. https://doi.org/10.1515/lwr-2017-0003
Vieco-Saiz N, Belguesmia Y, Raspoet R, Auclair E, Gancel F, Kempf I, Drider D. 2019. Benefits and inputs from lactic acid bacteria and their bacteriocins as alternatives to antibiotic growth promoters during food-animal production. Front Microbiol. 10:1–17. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00057
Wang X, Li E, Chen L. 2016. A review of carbohydrate nutrition and metabolism in crustaceans. N Am J Aquac. 78(2):178–187. https://doi.org/10.1080/15222055.2016.1141129
Wasiw J, Yépez V. 2015. Evaluación poblacional del camarón Cryphiops caementarius en ríos de la costa sur del Perú. Rev Investig Vet del Perú. 26(2):166. https://doi.org/10.15381/rivep.v26i2.11103
Xiao X, Han D, Zhu X, Yang Y, Xie S, Huang Y. 2014. Effect of dietary cornstarch levels on growth performance, enzyme activity and hepatopancreas histology of juvenile red swamp crayfish, Procambarus clarkii (Girard). Aquaculture. 426–427:112–119. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.01.029
Yang Q, Zhou X, Zhou Q, Tan B, Chi S, Dong X. 2009. Apparent digestibility of selected feed ingredients for white shrimp Litopenaeus vannamei, Boone. Aquac Res. 41(1):78–86. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02307.x
Zettl S, Cree D, Soleimani M, Tabil L. 2019. Mechanical properties of aquaculture feed pellets using plant-based proteins. Cogent Food Agric. 5(1):1656917. https://doi.org/10.1080/23311932.2019.1656917
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